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Elabscience一步法TUNEL原位細(xì)胞凋亡檢測試劑盒怎么用?

 更新時(shí)間:2023-12-22 點(diǎn)擊量:857

Elabscience一步法TUNEL原位細(xì)胞凋亡檢測試劑盒是一款靈敏度高且能快速簡便的檢測細(xì)胞凋亡的產(chǎn)品。本試劑盒適用于組織樣本(石蠟切片、冰凍切片)和細(xì)胞樣本(細(xì)胞涂片、細(xì)胞爬片)的原位凋亡檢測,檢測結(jié)果可通過熒光顯微鏡直接觀察。那么你知道Elabscience一步法TUNEL原位細(xì)胞凋亡檢測試劑盒該怎么用嗎?讓我們一起來看看吧!

一、試劑配制

1) 1×蛋白酶K工作液:取1μL Proteinase K (100×) 加入99μLPBS中,混勻?,F(xiàn)用現(xiàn)配。

2) 1×DNase I Buffer 工作液:按照 9:1 的比例用 ddH2O 將DNase I Buffer (10×) 稀釋待用?,F(xiàn)配現(xiàn)用。

3) DNase I 工作液(200 U/mL):用 1×DNase I Buffer 工作液,按照 99:1 稀釋比將 DNase I (20 U/μL) 稀釋待用?,F(xiàn)配現(xiàn)用。

注:DNase I 會(huì)在劇烈混合下變性,建議不要渦旋

DNase I 溶液。

4) DAPI工作液:取4μLDAPI Reagent(25μg/mL)加入96μL PBS中混勻?,F(xiàn)配現(xiàn)用。

二、固定與通透

1. 細(xì)胞樣本

1) 細(xì)胞爬片:將細(xì)胞爬片浸入PBS漂洗1次,濾紙吸干周圍水分,再浸入固定液(自備),室溫固定 15~20 min 或4°C固定1~2 h。

細(xì)胞涂片:收集細(xì)胞,加入一定體積的 PBS 重懸細(xì)胞沉淀,然后加入和PBS等體積的固定液(自備),室溫固定15~20 min 或 4°C固定1~2 h。600×g 離心 5 min,PBS重懸,取25~50μL細(xì)胞懸液涂片在載玻片上晾干。

注:細(xì)胞固定是分析凋亡樣本的重要步驟。未固定的細(xì)胞可能會(huì)丟失較小的 DNA片段,導(dǎo)致較低的信號。

2) 固定好的樣本浸入 PBS 漂洗 3 次,每次 5 min。

3) 將樣本浸入通透液(自備)中,37°C 作用 10 min。

4) 將通透好的樣本浸入 PBS 漂洗 3 次,每次 5 min。

2. 石蠟切片

1) 用常規(guī)方法將切片脫蠟水化。將切片浸入二甲苯(自備)脫蠟2次,每次10 min;無水乙醇(自備)浸泡切片2次,每次5 min;90%、80%、70%的乙醇水溶液(自備)各一次,每次 3 min。

注:低溫可能影響二甲苯脫蠟效果。當(dāng)室溫低于 20°C 時(shí),二甲苯脫蠟時(shí)間可延長至 20 min。

2) 脫蠟好的樣本浸入PBS漂洗3次,每次5 min。

3) 濾紙吸干切片組織周圍的水分,每個(gè)樣本上滴加100 μL 1×蛋白酶 K 工作液,37°C 反應(yīng) 20 min。

注:不同組織或物種的樣本反應(yīng)時(shí)間可能不同。建議進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),確定反應(yīng)時(shí)間。

4) 將通透好的樣本浸入 PBS 漂洗3次,每次5min。

3. 冰凍切片

1) 取出冰凍切片,平衡至室溫,再浸入固定液(自備),室溫(15~25°C)固定 30 min。

2) 固定好的樣本浸入 PBS 漂洗2次,每次5 min。

3) 每個(gè)樣本上滴加100 μL 1×蛋白酶K工作液,37°C 反應(yīng)10~20 min。

注:不同組織或物種的樣本反應(yīng)時(shí)間可能不同。建議進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),確定反應(yīng)時(shí)間。

4) 將通透好的樣本浸入PBS漂洗3次,每次5 min。

三、標(biāo)記

1. 分組設(shè)置

分組

樣本選擇

特點(diǎn)

目的

陽性對照

任選一張實(shí)驗(yàn)組切片

可選做,DNase I處理切斷 DNA,產(chǎn)生暴露的 3'-OH末端,作為陽性樣本

驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)流程和試劑的有效性

陰性對照

任選一張實(shí)驗(yàn)組切片

可選做,標(biāo)記工作液中不含 TdT酶

排除樣本自發(fā)熒光及樣本和染色試劑的非特異性染色;調(diào)整曝光強(qiáng)度

實(shí)驗(yàn)組

待檢測切片樣本

必做,孵育標(biāo)記工作液,保持實(shí)驗(yàn)檢測條件的一致性

實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)來源

陽性對照

1) 滴加100 μL 1×DNase I Buffer工作液到已通透的樣本上, 室溫平衡5 min。

2) 用吸水紙去除樣本上多余的液體。加入100 μL稀釋后的DNase I工作液(200 U/mL),37°C孵育10~30 min。

3) 樣本浸入 PBS 漂洗3次,每次5 min。

陰性對照

1) 滴加 100 μL 1×DNase I Buffer工作液到已通透的樣本上,室溫平衡 5 min。

2) DNase I Buffer孵育陰性樣本,37°C 孵育10~30 min。

3) 樣本浸入PBS漂洗3次,每次 5 min。

實(shí)驗(yàn)組

1)實(shí)驗(yàn)組通透完成后在PBS中靜置,等待陽性對照和陰性

對照處理后共同進(jìn)行標(biāo)記染色。

2. 標(biāo)記工作液的配制

計(jì)算好樣本量集中配置,每個(gè)樣本用量按照下表配制,充分混勻,現(xiàn)用現(xiàn)配。

組分

陽性對照/實(shí)驗(yàn)組

陰性對照

TdT   Equilibration Buffer

35   μL

40   μL

Labeling   Solution

10   μL

10   μL

TdT   Enzyme

5   μL

0   μL

3. 標(biāo)記步驟

1) 每個(gè)樣本滴加100 μL TdT Equilibration Buffer,37°C 濕盒中平衡 10~30 min。

2) 吸水紙吸除TdT Equilibration Buffer(注意不要干片)。每個(gè)樣本滴加50 μL標(biāo)記工作液,放入濕盒中37°C避光反應(yīng)60 min。

注:如果信號強(qiáng)度較弱,則可延長 DNA 標(biāo)記反應(yīng)的培養(yǎng)時(shí)間。某些系統(tǒng)可能需要在37°C下反應(yīng)4小時(shí)。

3) 樣本浸入 PBS 漂洗3次,每次5 min。

4) 吸水紙吸干水分后滴加DAPI工作液,室溫避光孵育5min,對細(xì)胞核進(jìn)行復(fù)染。

5) 樣本浸入PBS漂洗4次,每次 5 min。

6) 用吸水紙吸干多余的液體,用含抗熒光淬滅劑(自備)的封片劑封片。

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